Способ моделирования экспериментального острого орхоэпидидимита

(51) 61 16/00 (2006.01) 61 19/00 (2006.01) 01 33/483 (2006.01) КОМИТЕТ ПО ПРАВАМ ИНТЕЛЛЕКТУАЛЬНОЙ СОБСТВЕННОСТИ МИНИСТЕРСТВА ЮСТИЦИИ РЕСПУБЛИКИ КАЗАХСТАН ОПИСАНИЕ ИЗОБРЕТЕНИЯ К ИННОВАЦИОННОМУ ПАТЕНТУ орхиэпидидимита для усовершенствования общепринятых и разработка новых методов диагностики, лечения и профилактики этого заболевания у людей. Способ моделирования экспериментального острого орхиэпидидимита включает введение в половые органы экспериментального животного бактериальной культуры, при этом о введение осуществляют в паренхиму мошонки на глубину 3 мм в объеме 0,2 мл, в качестве бактериальной культуры используют смешанные культуры стафиллококстрептококк в титре 106 микробных тел. Полученная модель экспериментального острого орхиэпидидимита в виде острого воспаления яичка и придатка, идентичная клиническому прототипу,дат основание полагать,что подобный интралюминарный рефлюкторно-адгезивный патогенетический механизм присущ орхоэпидидимиту в клинической практике.(72) Алчинбаев Мырзакарим Каримович Медеубеков Улукбек Шалхарович Кусымжанов Суният Мирзакенович Буйрашев Ануар Канашевич Токтабаянов Биржан Галымович Аубакирова Айгуль Токтасыновна(73) Акционерное общество Научный центр урологии им. академика Б.У. Джарбусынова(56) Чиненный В.Л. Острый эпидидимит в урологической практике.// автореферат диссертации на соискание ученой степени кандидата наук.,Москва, 1991, с.14-15(54) СПОСОБ МОДЕЛИРОВАНИЯ ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНОГО ОСТРОГО ОРХОЭПИДИДИМИТА(57) Изобретение относится к медицине, а именно к урологии и предназначено для получения экспериментальной модели острого Изобретение относится к экспериментальной медицине, а именно к урологии и предназначено для получения экспериментальной модели острого орхиэпидидимита для усовершенствования общепринятых и разработка новых методов диагностики, лечения и профилактики этого заболевания у людей. Острое воспаление яичка и придатка(орхоэпидидимит), является одним из наиболее частых урологических заболеваний. Более 27 мужчин на протяжении жизни переносят эпидидимоорхит. Статистические данные о частоте заболевания свидетельствуют об актуальности его изучения с различных точек зрения патогенетической, диагностической, лечебной, про филактической. Переход острого орхоэпидидимита в хронический чреват многими последствиям, среди которых наиболее серьзны нарушение проходимости придатка яичка,развитие склеротического и дистрофического процессов в яичке, что приводит к нарушению репродуктивной функции этих органов на стороне поражения. Известен способ моделирования экспериментального острого орхиэпидидимита,включающий вскрытие мошонки экспериментального животного (крыса), выделение яичка и семявыносящего протока и введение в его проток культуры в объеме 0,1-0,2 мл кишечной палочки в титре 108 мл микробных тел с последующим ушиванием разреза мошонки(Чиненный В.Л. Острый эпидидимит в урологической практике.- автореферат диссертации на соиск. уч.степени канд. наук. - 1991. - Москва.с.14-15). Недостатком способ является его травматичность, а также то, что введение в семявыносящий проток культуры кишечной палочки для моделирования воспалительного процесса орхиэпидидимита является недостаточно адекватным и оптимальным. Задачей изобретения является разработка способа моделирования экспериментального острого орхиэпидидимита, который является менее травматичным и более воспроизводимым,демонстративным и оптимальным. Способ моделирования экспериментального острого орхиэпидидимита включает введение в половые органы экспериментального животного бактериальной культуры, при этом введение осуществляют в паренхиму мошонки на глубину 3 мм в объеме 0,2 мл, в качестве бактериальной культуры используют смешанные культуры стафиллококстрептококк в титре 106 микробных тел. Способ осуществляют следующим образом. Животных содержат в одинаковых условиях обычного виварного режима при смешанном освещении. Кормление производят два раза в день в соответствии с установленными нормами. Для моделирования экспериментального острого орхиэпидидимита используют белых крысы самцы линии Вистар массой тела 250-400 г, т.к. их 2 наружные гениталии имеют относительно крупные размеры. Операционное поле (яичко) предварительно обрабатывают 70 спиртовым раствором хлоргексидина. Введение осуществляют в паренхиму мошонки инсулиновым шприцом на глубину 3 мм, в объеме 0,2 мл. В качестве бактериальной культуры используют смешанные культуры стафиллококстрептококк в титре 106 микробных тел. Контрольным животным производят ведение 0,9 физиологического раствора в паренхиму мошонки. Для подтверждения модели экспериментального острого орхиэпидидимита проводят ультразвуковой исследование семенников экспериментальных животных на аппарате 5 поверхностным датчиком с частотой 8-ЮМгц. Также проводят УЗДГ и морфологическое исследование. Клиническую картину острого орхиэпидидимита у экспериментальных животных наблюдают на 3, 7,15 и 30 сутки после введения микробной взвеси. Клиническую картину острого орхиэпидидимита у экспериментальных животных наблюдают на 3,7,15 и 30 сутки после введения микробной взвеси. При этом обращают внимание на следующие клинические показатели 1 - общее состояние животного температуру, вес животного, состояние половых желез. Пример выполнения способа. Белой крысе-самцу в яичко ввели в паренхиму мошонки инсулиновым шприцом на глубину 3 мм 0,2 мл бактериальной культуры(смешанные культуры стафиллококстрептококк) в титре 106 микробных тел. Клиническую картину острого орхиэпидидимита у экспериментального животного наблюдали на 3,7,15 и 30 сутки. При этом обращали внимание на следующие клинические показатели 1 - общее состояние животного температуру, вес животного, состояние половых желез. Ультразвуковое исследование семенников экспериментальных животных проводили на аппарате 5 поверхностным датчиком с частотой 8-10 М гц. Также проведено УЗДГ на 3, 7, 15 и 30 сутки. У крысы в остром периоде выявили повышение температуры тела по сравнению с контролем,увеличение в размере семенников, снижение веса,уменьшение пульсационного индекса в артериях семенников, при УЗИ определялись мелкие гиоэховключения размером 2-4 мм,свидетельствующие о наличии воспалительного процесса в яичке, сосудистый рисунок яичка усиливался,количество видимых сосудов увеличилось. При морфологическом исследовании у крысы после введения, бактериальной культуры в конце 1 недели в семенниках были обнаружены изменения,свидетельствующие о нарушении сперматогенеза. Повреждение семенников характеризовалось атрофией сперматогенного эпителия до стадии сперматогоний. Результаты гистологического исследования семенников крыс экспериментальной группы в начале опыта на 3 сутки, показали, что в паренхиме органа отмечалось умеренная деструкция, некробиоз и слущивание клеток сперматогенного эпителия в просвет семенных канальцев, развивались изменения в строении компонентов гематотестикулярного барьера. На 7 сутки наблюдали набухание неклеточных слоев собственной оболочки семенных канальцев и клеток Сертоли. Во многих участках эпителий семенных канальцев теряли свою многослойность. Апробация способа (экспериментальная модель) осуществлена на 40 крысах (табл. 1,2,3,4). Анализируя данные таблицы 1 видно что, в 2 группе наблюдали достоверное повышение температуры тела у экспериментальных животных в сравнении с контрольной 1 группой. На 4 сутки после введения бактериальной культуры 1 экспериментальное животное, которой ввели 0,2 мл смешанной флоры погибло, был произведен забор яичка вместе с придатком на морфологической исследование, у остальных животных отмечались клинические и локальные проявления орхоэпидидимита - табл.2,3,4,5. Таблица 1 Динамика изменений температуры тела у крыс сутки Таблица 2 Динамика изменений размеров семенников у крыс сутки Таблица 3 Динамика изменения веса у крыс сутки Таблица 4 Динамика изменений пульсационного индекса в артериях семенников крыс после введения культуры в различных группах Группы р 0,05 в сравнении с показателями до введения культуры УЗИ данныегруппа(проведено введение стафилококкстрептококк). 3 сутки определялось увеличение размеров яичка на 3-5 мм, в структуре - мелкие гиоэховключения размером 2-4 мм,свидетельствующие о наличии воспалительного процесса в яичке, сосудистый рисунок яичка усиливается,количество видимых сосудов увеличивается. 7 сутки определялось увеличение размеров яичка на 5-7 мм, в структуре - множественные мелкие гипоэховключения, сосудистый рисунок яичка усилен, количество видимых сосудов увеличено. 15 сутки размеры яичка прежние, в структуре определялись единичные гипоэховключения, а 3 также появление мелких участков уплотнения размером 1-2 мм. При морфологическом исследовании у крыс после введения, бактериальной культуры в конце 1 недели в семенниках были обнаружены изменения,свидетельствующие о нарушении сперматогенеза. Повреждение семенников характеризовалось атрофией сперматогенного эпителия до стадии сперматогоний. Результаты гистологического исследования семенников крыс экспериментальной группы в начале опыта на 3 сутки, показали, что в паренхиме органа отмечалось умеренная деструкция, некробиоз и слущивание клеток сперматогенного эпителия в просвет семенных канальцев. А также развивались изменения в строении компонентов гематотестикулярного барьера. На 7 сутки наблюдали набухание неклеточных слоев собственной оболочки семенных канальцев и клеток Сертоли. Во многих участках эпителий семенных канальцев теряли свою многослойность. Созданная модель экспериментального острого орхиэпидидимита показала бурное развитие воспалительного процесса в яичке при инфицировании бактериями,обладающими адгезивным свойствами. Полученная модель экспериментального острого орхиэпидидимита в виде острого воспаления яичка и придатка, идентичная клиническому прототипу,дат основание полагать,что подобный интралюминарный рефлюкторно-адгезивный патогенетический механизм присущ орхоэпидидимиту в клинической практике. ФОРМУЛА ИЗОБРЕТЕНИЯ Способ моделирования экспериментального острого орхиэпидидимита, включающий введение в половые органы экспериментального животного бактериальной культуры, отличающийся тем, что введение осуществляют в паренхиму мошонки на глубину 3 мм в объеме 0,2 мл, в качестве бактериальной культуры используют смесь культур стафиллококка и стрептококка в титре 106 микробных тел.