Штамм бактерии Salmonella typhimurium B – 0005, используемый для приготовления сухой живой вакцины против сальмонеллеза водоплавающей птицы

(51) 61 39/112 (2006.01) 12 1/20 (2006.01) МИНИСТЕРСТВО ЮСТИЦИИ РЕСПУБЛИКИ КАЗАХСТАН ОПИСАНИЕ ИЗОБРЕТЕНИЯ К ИННОВАЦИОННОМУ ПАТЕНТУ представляет собой штаммВ - 0005, используемый для приготовления сухой живой вакцины против сальмонеллеза водоплавающей птицы. Технический результат,обеспечиваемый изобретением,выражается в изыскании аттенуированного безвредного и иммуногенного штамма. Штамм бактерийВ 0005, используемый для получения сухой живой вакцины против сальмонеллеза водоплавающей птицы, депонирован в ТОО Казахский научно исследовательский ветеринарный институт(72) Егорова Наталья Николаевна Мусаева Асия Кыбылашевна(73) Товарищество с ограниченной ответственностью Казахский научноисследовательский ветеринарный институт(54) ШТАММ БАКТЕРИИ- 0005, ИСПОЛЬЗУЕМЫЙ ДЛЯ ПРИГОТОВЛЕНИЯ СУХОЙ ЖИВОЙ ВАКЦИНЫ ПРОТИВ САЛЬМОНЕЛЛЕЗА ВОДОПЛАВАЮЩЕЙ ПТИЦЫ(57) Изобретение относится к области ветеринарии,в частности ветеринарной микробиологии и Изобретение относится к области ветеринарии, в частности ветеринарной микробиологии,и представляет собой аттенуированный штамм,используемый для приготовления сухой живой вакцины против сальмонеллеза свиней. Известен аттенуированный штамм бактерий,используемый для получения живой вакцины против сальмонеллеза водоплавающей птицы Предварительный патент Республики Казахстан 4939, кл. А 61 39/12,1997 г. Известный штамм бактерий не обладает высокой иммуногенной активностью, сообщает утятам непродолжительный иммунитет. Задачей данного изобретения является получение аттенуированного со слабой остаточной вирулентностью и высокой иммуногенной активностью штамма бактерии. Технический результат,обеспечиваемый изобретением, выражается в выражается в изыскании аттенуированного безвредного и иммуногенного штамма бактерии. Штамм бактерииВ-0005 депонирован в Товариществе с ограниченной ответственностью Казахский научно исследовательский ветеринарный институт(КазНИВИ), используемый для приготовления сухой живой вакцины против сальмонеллеза водоплавающей птицы. Идентификацию штамма бактерии проводят по основным культурально - морфологическим,биохимическим и антигенным свойствам, согласно определителю/,2005,2,, . 764 - 799. Селекция штамма. Штамм бактерииВ-0005 выделен из костного мозга 2-х месячного утенка, принадлежавшего частному владельцу из Чиликского района Алматинской области. Трубчатую бедренную кость распиливали,и костный мозг протыкали стерильной пастеровской пипеткой, набирали костный мозг и высевали пастеровской пипеткой в мясопептонный бульон(МПБ). Посевы культивировали в термостате при 37 С 18 - 20 часов. Отмечалось равномерное помутнение МПБ. Затем с МПБ делали посевы на висмут - сульфитный агар, среду Эндо и на(мясопептонный агар) МПА. При посеве отдельных колоний сальмонелл, выделенных с МПА на чашках Петри, отмечалось, что при пересеве в МПБ при 20 часах инкубации и дальнейшем пересеве в одинаковой дозировке 1 см 3 на 10,0 см 3 МПБ отмечалось неодинаковое накопление бакмассы. Значительная временная разница в интенсивности роста культур указывала на неоднородность популяциипо своей репродуктивной активности. Исходя из результатов исследований, в целях получения однородного популяционного свойства бактерий, обладающих 2 сравнительно короткой лагфазой,сопровождающейся накоплением более высокой бактериальной массы,были проведены исследования по селекции отдельных колоний штамма сальмонелл с активными ростовыми репродуктивными свойствами. После отбора активных клоновкультуру высевали на МПА с добавлением возрастающих концентраций стрептомицина в разведениях 125, 150, 1100,1150, 1200, 1250, 1300 мкг/см 3. Культуру сальмонелл выращивали на МПА с постепенно возрастающими концентрациями стрептомицина. Путем селекции штамма бактерии на МПА при концентрации антибиотика (1250 мкг/см 3) путем ступенчатого отбора колоний получен аттенуированный(ослабленный) штамм,выращенный при максимальной концентрации стрептомицина. Методом разведений выделяли аттенуированные клоны сальмонелл, выросшие на чашках Петри с МПА со стрептомицином,которые при последующем посеве в пробирки с МПБ давали наиболее обильный рост. Накопление бактериальной массы сальмонелл определяли по 1 миллиардному оптическому сальмонеллезному бактериальному стандарту мутности ГИСК им. Тарасевича. Селекционное выделение клонов сальмонелл,отличающихся по скорости репродукции и выросших на МПА с концентрацией стрептомицина 1250 мкг/см 3,проводили последовательно двукратно,затем клоны размножали и после этого изучали их активность по наибольшему накоплению бактериальной массы и активности роста на средах с добавлением стрептомицина. Стрептомицин ослабил вирулентные свойства эпизоотического штамма в 20 раз. Устойчивость к стрептомицину позволит дифференцировать бактерии вакцинного штамма от эпизоотических культур, которые не растут на средах со стрептомицином. В результате проведенного клонирования был выделен изолят 5 из популяции штамма,который был выбран для дальнейшей работы, так как за 18 часов культивирования в термостате на МПБ с добавлением 1250 мкг/см 3 стрептомицина накопление бактериальной массы составляло более 3 миллиардов микробных клеток в 1,0 см 3 МПБ. У остальных клонов этот показатель был несколько ниже (около 1 млрд м.к. /см 3). Оптимальный уровень аттенуации обеспечит высокую иммуногенную активность вакцинного штамма бактерии, используемого для изготовления вакцины. При повторной проверке выбранного штамма бактерии (изолят 5) через 3 месяца после хранения на полужидком агаре под вазелиновым маслом под резиновыми парафинированными пробками была установлена стабильность клона в быстроте роста на средах, что указывало на целесообразность его использования при проведении дальнейших исследований по отбору штамма бактерии для изготовления вакцинного препарата. Изолят 5 был условно обозначен штаммомВ-0005, который депонирован в коллекции культур микроорганизмов Товарищества с ограниченной ответственностью Казахский научно исследовательский ветеринарный институт. Морфологические признаки. Штамм бактерииВ-0005 - мелкие палочки с закругленными краями, реже овоидной формы, 24 мкм в длину и 0,2 - 0,4 мкм в ширину. Сальмонеллы подвижные, с перитрихиально расположенными жгутиками, легко окрашиваются анилиновыми красками, грамотрицательные. Спор и капсул не образуют. Бактерии штаммаявляются крупными по размеру по сравнению с другими видами сальмонелл. Культуральные свойства. Сальмонеллы - аэробы или факультативные аэробы. Хорошо развиваются на обычных питательных средах, оптимальная температура роста 37 С, присреды 7,2-7,4. На МПБ штамм бактерииВ 0005 образует равномерное помутнение со слизистым осадком, на МПА - серовато голубоватые мелкие опалесцирующие колонии,вокруг которых иногда образуются периферические валики. При хранении Сальмонеллезные культуры довольно быстро диссоциируют в- форму. На среде Эндо сальмонеллы образуют слегка розоватые прозрачные колонии на висмут - сульфитном агаре мелкие черные колонии с металлическим блеском,участки среды под колониями также окрашиваются в черный цвет на среде Плоскирева - бесцветные колонии. На среде Клиглера сальмонеллы растут в виде мелких колоний ярко желтого цвета. Для культивирования сальмонелл используют также среды накопления - селинитовую, Мюллера,Кауфмана, Киллиана. Учет характера роста необходимо проводить через 24 - 48 часов. Биохимические свойства. Штамм бактерииВ-0005 не изменяет инозит,глицерино - фуксиновый бульон, раффинозу,салицин образует сероводород и не продуцирует индол. Не ферментирует мочевину, лактозу,сахарозу, не разлагает желатин. Ферментирует с образованием кислоты и газа глюкозу, галактозу,маннозу, арабинозу, рамнозу, маннит, мальтозу,дульцит, сорбит, восстанавливает нитраты в нитриты. Сальмонеллы растут на агаре Симмонса(желтое окрашивание среды). Антигенная структура. УВ - 0005 два основных антигенных комплекса Оантиген (соматический) термостабильный 1, 4, 5, 12 Н - антиген, белковой природы 1-я фаза -2-я фаза 1,2. О- и Н- антигены сальмонелл вызывают образование различных антител, отличающихся по характеру агглютината. О - агглютинация мелкозернистая, бактериальные клетки соединяются полярными поверхностями,образуя мелкие агрегаты, для О- агглютинации культура берется с верхней части пробирки, для Н - агглютинации - со дна. Н агглютинация характеризуется образованием крупного хлопьевидного рыхлого агглютината,клетки соединяются своими жгутиками, происходит их полное обездвиживание. Штамм бактерииВ 0005 относится к серологической группе В. Штамм бактерииВ-0005 является стабильно аттенуированным(ослабленным) вакцинным, не реактогенным, не обладает патогенными свойствами для утят. Штамм бактерии обладает слабой остаточной вирулентностью. Исключена возможность реверсии штамма. За время хранения в лабораторных условиях штамм не изменил культурально морфологические, биохимические свойства, также антигенную структуру. Маркерные признаки штамма бактерииВ-0005. Штамм бактерииВ-0005, полученный из вирулентной эпизоотической культуры под влиянием химического мутагена - стрептомицина с последующей селекцией мутантов, отличается слабой остаточной вирулентностью, безвредностью,выраженной иммуногенной активностью,отсутствием токсигенных свойств. Образовывает сероводород,не продуцирует индола,не ферментирует лактозу и сахарозу. Маркерным признаком является продукция сероводорода. Является прототрофом. Существенным отличием штамма бактерииВ-0005 от вирулентного прототипа является ауксотрофность в отношении тиамина и никотиновой кислоты штамм образует аргинин - декарбоксилазу и слабо-лизиндекарбоксилазу. Вакцинный штамм не реверсирует при пассировании на восприимчивых животных(белые мыши) и обладает стабильной аттенуацией. Штамм растет на средах с добавлением высоких концентраций стрептомицина,природные эпизоотические изоляты не растут, стрептомицин подавляет их рост. Титр сыворотки в РА 1800. Физиологические - прототроф, хемоорганотроф,обладает дыхательным и бродильным типом метаболима. Аэроб. Серологические при типизации с диагностическими сальмонелезными сыворотками имеет постоянную реакцию с поливалентной сальмонеллезной А, В, С, Д, Е сывороткой и монорецеторными О - сывороткой 1, 4, 5,12 и Н (1-я фаза), сыворотками - 1,5 (2-я фаза). Патогенные свойства. Штамм бактерииВ-0005 безвреден для белых мышей. При подкожном введении белым мышам массой 16-18 г 10 млн микробных клеток (0,2 см 3 50 млн взвеси суточной агаровой культуры сальмонелл) по оптическому стандартному образцу ГИСК им. Тарасевича в объеме 0,2 см 3 вызывает гибель не более 2 белых мышей из 10 в течение 10 сут наблюдения. Иммуногенность для белых мышей. Штамм бактерииВ - 0005 обладает выраженной иммуногенностью для белых мышей массой 16-18 граммов, защищая 100 животных при однократной подкожной иммунизации белых мышей живой вакциной из штамма бактерииВ - 0005 в дозе 107 м. к. 3 взвеси суточной агаровой культуры сальмонелл и последующим подкожным заражением через 21 сутки 2,5 50 смывом суточной агаровой культуры вирулентного (контрольного) штамма 371. Выживаемость опытных животных составила 100 - 10 голов. Из 10 контрольных мышей аналогичной массы,зараженных одновременно с вакцинированными, погибли 9 животных. Срок наблюдения 10 суток. Пример. Питательной средой для изготовления сухой живой вакцины против сальмонеллеза свиней служит бульон Хоттингера (200-250 мг аминного азота), содержащий 10 печеночного экстракта,0,4 пептона. Для приготовления питательной среды используют основной перевар Хоттингера. На 1 кг мясного фарша добавляют 1,5 дм 3 дистиллированной воды, подогретой до 40 С, и подщелачивают 20 раствором едкого натра, так чтобы концентрация водородных ионов была 7,8 8,0. Затем на каждый килограмм фарша добавляют 150-170 г измельченной поджелудочной железы или 18-20 г панкреатина и на каждый дм 3 смеси -10,0 см 3 хлороформа. Ферментативное расщепление должно продолжаться 5-6 сут при 40-45 С. Химические показатели качественного перевара общий азот -800- 1200 мг аминный азот - 500-750 мг триптофан- 100 150 мг. Содержание (мг) общего азота определяют методом перегонки Къельдаля аминного азота (мг) - формольным титрованием триптофана (мг) - методом Пешкова. Приготовление печеночного экстракта. На 400,0 г свежей или свежезамороженной печени крс или свиней, освобожденной от жира и пленок,измельченной на кусочки по 30,0-50,0 г, добавляют 0,5 дм 3 дистиллированной воды и кипятят в течение часа, после чего фильтруют через ватно-марлевый фильтр. Приготовление питательной среды. Для приготовления питательной среды к надосадочной жидкости основного перевара Хоттингера добавляют дистиллированную воду с таким расчетом, чтобы содержание аминного азота было не менее 200-250 мг. Затем добавляют 10 печеночного экстракта, 0,4 пептона, 3-4 агара. Смесь кипятят в течение 30 минут, затем устанавливаютсреды до 7,7-7,8 путем добавления 20 едкого натра, добавляют 15 дистиллированной воды на выкипание, после чего добавляют 0,3 химически чистого хлорида натрия. После растворения указанных ингредиентов добавлением 20 едкого натра устанавливают 7,8-9,0. Среду кипятят 30 минут, отстаивают 11,5 часа, фильтруют через ватно - марлевый фильтр. Для контроля стерильности приготовленную питательную среду выдерживают термостате 72 часа при 37 С (отсутствие контаминации). Готовая питательная среда должна быть стерильной,прозрачной или слегка опалесцирующей,7,4-7,6 и содержать аминный азот 200-250 мг. Приготовление посевного материала. Для изготовления сухой живой вакцины против сальмонеллеза свиней каждый раз используют 4 отдельную ампулу с лиофилизированной культурой штамма бактерииВ-0005. Каждый раз проверяют морфологические,культуральные,биохимические свойства и агглютинабельность культуры с монорецепторными сальмонеллезными сыворотками О//,//, //, // Н -//, Н - 1,2// производства Краснодарской биофабрики и Санкт-Петербургского научно-исследовательского института вакцин и сывороток и предприятия по производству бактерийных препаратов. Ампулу с сухим вакцинным штаммом бактерии вскрывают и добавляют в нее 2,0 см 3 стерильного физиологического раствора. Полученную взвесь заливают по 1,0 см 3 в два флакона с бульоном Хоттингера (вместимость флакона 100,0 см 3, объем среды - 1/3 флакона). Культуру выращивают в термостате 14-15 часов при температуре (371,0)С(культура первой генерации). Культуру первой генерации проверяют на чистоту микроскопией мазков, окрашенных по Граму, типичность роста, стерильность и засевают 50,0 см 3 в бутыль, содержащую 10,0 дм 3 бульона Хоттингера(культура второй генерации). Культивирование проводят при (371,0)С 1820 часов. Культура второй генерации служит посевным материалом для получения в последующем биомассы. Выращенную и проверенную на чистоту суточную матриксную культуру второй генерации с соблюдением условий стерильности засевают в бутыли со стерильной питательной средой,охлажденной до 37-30 С из расчета 5-10 матриксной расплодки к общему объему питательной среды, одновременно добавляют 0,1(в перерасчете на сухое вещество) стерильного 40-го раствора глюкозы. Культуру, засеянную в бутыли, выращивают 1820 часов при (371,0)С с постоянным перемешиванием и непрерывной аэрации при(371,0)С. В процессе выращивания культуры через 5-6 часов после засева берут пробу для определения , чистоты роста и концентрации микробных тел. Добавляют 40 раствора глюкозы и продолжают выращивать еще в течение 4-6 часов. Выращенную культуру проверяют на чистоту популяции путем микроскопии и высева в пробирки с МПА, МПБ, МППБ под вазелиновым маслом,агаром Сабуро, на чашки Петри с МПА. Культура должна агглютинироваться монорецепторными сыворотками-//, //, //, // Н -//, Н - 1,2 //. После получения результатов,подтверждающих отсутствие загрязнения выращенной культуры посторонней микрофлорой (просмотр посевов, микроскопия мазков, окрашенных по Граму), производят определение концентрации микробных клеток по оптическому стандарту мутности ГИСК им. Тарасевича. Бактериальную массу хранят при температуре от 2 до 4 С 1-1,5 суток. Культура сальмонелл должна иметь концентрацию 20 млрд микробных клеток в 1,0 см 3 и 7,2 - 7,4. Бактериальную суспензию, разведенную средой для лиофилизации (сахарозо-желатиновой средой) до концентрации 20 млрд 1 млрд микробных клеток в 1,0 см 3 по оптическому стандарту мутности ГИСК им. Тарасевича, расфасовывают по 4,0 см 3 в стерильные ампулы. Погрешность расфасовки 1. После этого ампулы с вакциной подвергают лиофильной сушке и запаивают под вакуумом. Приготовление среды высушивания В кипящей дистиллированной воде растворяют 1,3-2,0 желатина ( 7,4-7,6), добавляют 10 сахарозы. После растворения компонентов смесь фильтруют через ватно-полотняный фильтр. Стерилизуют 20 мин при 110 С,7,0 - 7,2. Штамм бактерииВ-0005 получен из вирулентной культуры, являющейся основным возбудителем сальмонеллеза свиней на территории республики,под влиянием стрептомицина. Штамм бактерииВ-0005 обладает типичными культурально-морфологическими, биохимическими и антигенными свойствами. Вирулентность вакцинного штамма по сравнению с природным прототипом снижена в 20 раз. Предложенный штамм бактерииВ-0005 эпизоотически актуален для птицеводческих хозяйств Республики Казахстан,изготовленная сухая живая вакцина является эффективной в профилактике сальмонеллеза водоплавающей птицы. Вакцина безвредна для утят и гусят,ареактогенна,обладает высокой иммуногенной активностью, защищает молодняк водоплавающей птицы от заражения сальмонеллезом. ФОРМУЛА ИЗОБРЕТЕНИЯ Штамм бактерии 0005, депонирован в ТОО Казахский научноисследовательский ветеринарный институт под коллекционным номером 5, используемый для приготовления сухой живой вакцины против сальмонеллеза водоплавающей птицы.